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        免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)實驗

        免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)實驗

        簡要描述:
        免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)實驗是以抗體和抗原之間的專一性作用為基礎(chǔ)的用于研究蛋白質(zhì)相互作用的經(jīng)典方法。是確定兩種蛋白質(zhì)在完整細胞內(nèi)生理性相互作用的有效方法。當(dāng)細胞在非變性條件下被裂解時,完整細胞內(nèi)存在的許多蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)間的相免疫共沉淀互作用被保留了下來。

        更新時間:2024-07-26

        訪問量:2308

        廠商性質(zhì):其他

        免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)實驗



        免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)實驗流程:

        • 樣品準備

        將不同分組的細胞從培養(yǎng)箱中取出(每組210cm的皿),在冰上用預(yù)冷的PBS洗一遍,加入裂解液(20mM Tris-HCL Ph7.5150 mM Nacl1%TritonX-1001 mM EDTA和蛋白酶抑制劑),用細胞刮裂解細胞。13000rpm 4℃離心10min,去上清進行蛋白定量。定量后原液備用。

        • 蛋白定量

        1 標準曲線的繪制:取一塊酶標板,按照下表加入試劑

        孔號

        1

        2

        3

        4

        5

        6

        7

        8

        蛋白標準液(μl

        0

        2

        4

        6

        8

        12

        16

        20

        去離子水(μl

        20

        18

        16

        14

        12

        8

        4

        0

        蛋白濃度(μg/μl

        0

        0.05

        0.1

        0.15

        0.2

        0.3

        0.4

        0.5

        2. 根據(jù)樣品數(shù)量,將BCA試劑A與試劑B按體積比為50:1配制適量BCA工作液,充分混勻;

        3. 各孔加入160μl BCA工作液;

        4. 把酶標板放在振蕩器上振蕩30sec37℃放置30分鐘,然后在562nm下測定吸光度。以吸光值為橫坐標,蛋白濃度(μg/μl)為縱坐標,繪出標準曲線;

        5. 在酶標板中加入2μl待測蛋白和18μl PBS(稀釋10倍),加入160μl BCA工作液把酶標板放在振蕩器上振蕩30sec37℃放置30分鐘,然后在562nm下測定吸光度

        6. 根據(jù)所測樣品的吸光值,在標準曲線上即可查得相應(yīng)的蛋白濃度(μg/μl,乘以樣品稀釋倍數(shù)(10)即為樣品實際濃度(單位:μg /μl)。

        • 共沉淀

        • 根據(jù)蛋白定量結(jié)果,將各組蛋白留取適量用于做input對照;

        • 分別取各組細胞蛋白置于21.5ml離心管中(2mg每管),其中一個加入2ug IgG,另外一個加入2ug IP指標對應(yīng)的抗體,冰上孵育2h

        • 分別向兩個管子中加入protein G-Agarose beadsRoche),加裂解液至1ml4℃旋轉(zhuǎn)混勻,孵育過夜;

        • 2500rpm4℃離心1min,去上清,1ml裂解液洗滌沉淀4次;

        • 加入2×蛋白上樣緩沖液,輕輕混勻后煮沸5min2500rpm離心1min,棄沉淀;

        • 將上清轉(zhuǎn)移至新的離心管中,用于western blot檢測相應(yīng)蛋白。

        • PAGE膠的制備

        1. 下層分離膠的制備

        根據(jù)目的蛋白的分子量選擇不同的凝膠濃度,高分子量蛋白用低濃度膠,低分子量蛋白用高濃度膠分離。 GRα 90kDa  AP-1  43.48kDa   IkB  39kDa  STAT3 7986kDa  NF-KB p65   故選用10%的膠。不同濃度的分離膠按下表進行配制,待下層膠凝固后進行上次濃縮膠的配制。

        2. 上層濃縮膠的配制

        根據(jù)需要按下表配制濃縮膠,并插好梳子。

        • 上樣及電泳

        1. 上樣

        每孔上樣量約為20ul蛋白,可以根據(jù)實驗要求加大上樣量。將配制好的PAGE膠放入電泳槽中,加入適量電泳緩沖液,取下梳子用槍輕輕吹打加樣孔,避免孔內(nèi)有余膠殘留影響上樣。將準備好的樣品用加樣槍慢慢加到對應(yīng)的孔內(nèi),注意勿溢出加樣孔。

        2. 電泳

        一般濃縮膠80V 20分鐘,分離膠120V 60分鐘,可以根據(jù)具體實驗要求調(diào)整電壓和時間。當(dāng)染料到達膠底部時切斷電源,停止電泳,進行下一步轉(zhuǎn)膜。

        • 轉(zhuǎn)膜

        轉(zhuǎn)膜分為濕轉(zhuǎn)和半干轉(zhuǎn),本實驗室選用半干轉(zhuǎn)。

        半干式轉(zhuǎn)膜中,三明治的排列為:////紙,用電轉(zhuǎn)緩沖液浸濕后,直接置于電轉(zhuǎn)儀的正負極之間。膠于負極而膜置于正極。半干式的電轉(zhuǎn)緩沖液不同于濕式的電轉(zhuǎn)緩沖液,推薦為:48 mM Tris, 39 mM glycine, 0.04% SDS, 20%甲醇。25V轉(zhuǎn)膜30分鐘即可。轉(zhuǎn)膜前將PVDF膜在甲醇中浸泡1-2 分鐘(NC膜在電轉(zhuǎn)液中浸泡10-20分鐘),再孵育于冰冷的電轉(zhuǎn)緩沖液中5 分鐘,膠也需在冰冷的電轉(zhuǎn)緩沖液中平衡3-5 分鐘,否則轉(zhuǎn)膜時會導(dǎo)致條帶變形。

        • 膜上蛋白的檢測

        為檢測轉(zhuǎn)膜是否成功,可用麗春紅染色,麗春紅染色工作液:2%的麗春紅貯備液110 稀釋,即加9 倍的ddH2O

        染色方法:將膜放入TBST 洗一次,再置于麗春紅染色工作液中,在室溫下?lián)u動染色5 分鐘,大量的水洗膜直至水變清無色蛋白條帶清晰,(膜也可以用TBST 或水重新洗后再進行染色)PVDF 膜需用甲醇再活化后用TBST洗后進行封閉。

        • 膜的封閉及抗體孵育

        1. 封閉:5%脫脂奶粉(檢測磷酸化蛋白用BSA)室溫封閉1小時或4過夜。

        2. 一抗:根據(jù)說明書GRα 1:800  AP-1  1:1000   IkB  1:1000  STAT3 1:1000  NF-KB  11000  稀釋抗體,抗體加入封閉液中稀釋到所需濃度,和膜室溫孵育2小時或4 ℃孵育過夜。

        3. 二抗:孵育一抗的膜用TBST洗滌3次,每次5min。隨后根據(jù)用量,按照1:1000稀釋HRP標記的二抗,與膜37℃孵育1h。用TBST洗滌3次,每次5min

        • 顯色

        ECL化學(xué)發(fā)光檢測:配制ECL發(fā)光液,根據(jù)用量,取ECL發(fā)光液AB等量混勻,加在膜的正面暗室避光5分鐘。倒掉顯色液,用紙小心吸取顯色液,在上面蓋上一層平整的透明紙。將其放入成像系統(tǒng)中進行掃描。可以根據(jù)條帶強弱再次感光或減短感光時間已達到理想結(jié)果。



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