一、慢病毒轉染實驗技術定義與核心價值
慢病毒轉染是利用改造后的慢病毒載體將外源基因遞送至靶細胞，實現長期穩定表達的基因導入技術。其核心優勢包括：
廣譜細胞適用性：可感染分裂細胞與非分裂細胞（如神經元、干細胞、原代細胞），突破傳統轉染限制 。
高效整合表達：病毒RNA經逆轉錄為DNA后整合至宿主基因組，實現外源基因的yong久性表達 。
低免疫原性：刪除病毒致病基因（如HIV的 tat、rev），顯著降低宿主免疫反應 。
操作便捷性：無需復雜轉染試劑，通過病毒顆粒直接感染細胞 。
術語辨析：
轉染（Transfection） ：通常指非病毒介導的核酸導入（如電穿孔、脂質體）。
轉導（Transduction） ：特指病毒介導的基因傳遞，慢病毒技術屬于此類 。
二、慢病毒轉染實驗分子機制：從病毒包裝到基因整合
（一）慢病毒載體系統構成
| 組分 | 功能 | 技術演進 |
|---|---|---|
| 轉移質粒 | 攜帶外源基因（如cDNA、shRNA）及包裝信號（Ψ） | 第三代載體刪除 tat，改用CMV啟動子驅動轉錄 |
| 包裝質粒 | 表達病毒結構蛋白（Gag、Pol） | 分割為gag/pol與rev兩質粒，降低重組風險 |
| 包膜蛋白質粒 | 表達VSV-G蛋白（水皰性口炎病毒G蛋白），決定宿主范圍 | 替代HIV天然包膜，擴大感染細胞類型 |
| 輔助質粒 | 提供Rev蛋白，促進未剪接RNA出核 | 增強病毒產量 |
（二）宿主細胞內的基因遞送流程
病毒進入：VSV-G蛋白結合靶細胞膜受體（如LDLR），介導膜融合 。
逆轉錄與入核：病毒RNA在胞質逆轉錄為cDNA，經整合前復合體（PIC）轉運至核內 。
基因組整合：病毒整合酶（Integrase）將cDNA隨機插入宿主染色體，實現yong久性表達 。
三、標準操作流程與技術優化
（一）病毒包裝與純化（以293T細胞為例）
| 步驟 | 操作要點 | 質控標準 |
|---|---|---|
| 質粒共轉染 | 四質粒系統（轉移+包裝+包膜+輔助）轉染293T細胞，48-72小時收集上清 | 質粒純度＞1.8（A260/A280），無內毒素 |
| 病毒濃縮 | 超速離心（50,000×g）或PEG沉淀法，提高滴度10-100倍 | 濃縮后滴度＞1×10? IFU/mL |
| 滴度測定 | 流式細胞術（熒光報告基因）或qPCR（病毒基因組拷貝數） | 功能性滴度（TU/mL）＞10?為合格 |
（二）靶細胞轉染與篩選
感染條件優化：
添加聚凝胺（Polybrene，8μg/mL）增強病毒吸附 。
感染復數（MOI）測試：通常MOI=5-20（根據細胞類型調整） 。
穩定株篩選：
抗生素篩選：嘌呤霉素（1μg/mL）處理7-14天，清除未轉染細胞 。
單克隆擴增：有限稀釋法獲得均一性細胞株 。
關鍵技巧：
非分裂細胞（如神經元）需延長感染時間至72小時 。
原代細胞建議使用低MOI（≤5）避免毒性 。
