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        感染疾病模型構建

        感染疾病模型構建

        簡要描述:
        感染疾病模型構建:構建感染性疾病動物模型是研究病原體致病機制、宿主免疫反應及藥物/疫苗評價的關鍵手段。以下是常見感染性疾病模型的構建方法、注意事項及示例,涵蓋細菌、病毒、真菌和寄生蟲模型。

        更新時間:2025-06-23

        訪問量:377

        廠商性質:其他

        一、感染疾病模型構建通用原則

        1. 病原體選擇

          • 臨床分離株(貼近人類感染)或實驗室標準株(如大腸桿菌ATCC 25922)。

        2. 動物選擇

          • 小鼠(常用)、大鼠、倉鼠、豚鼠或非人靈長類(如HIV研究需人源化小鼠)。

          • 免疫缺陷鼠(如SCID、NSG)用于研究宿主免疫機制。

        3. 感染途徑

          • 模擬自然感染途徑(如呼吸道、消化道、血液等)。


        二、常見感染疾病模型構建方法

        1. 細菌感染模型

        示例:肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae)肺部感染

        • 步驟

          1. 培養(yǎng)細菌至對數(shù)生長期(OD600≈0.6),離心后重懸于PBS。

          2. 麻醉小鼠,氣管內滴注50 μL菌液(1×10^6 CFU,劑量需預實驗確定)。

          3. 監(jiān)測體重、存活率,24-72小時后取肺組織進行CFU計數(shù)和病理分析。

        • 關鍵指標

          • 肺組織細菌載量(CFU/g)、炎癥因子(IL-1β、TNF-α)、肺水腫(濕/干重比)。

        2. 病毒感染模型

        示例:流感病毒(H1N1)呼吸道感染

        • 步驟

          1. 病毒擴增(MDCK細胞),測定TCID50。

          2. 麻醉小鼠,鼻內接種50 μL病毒液(1×10^3 TCID50)。

          3. 每日監(jiān)測體重,3-7天后取肺組織檢測病毒載量(qPCR)和病理變化。

        • 注意事項

          • 需在BSL-2及以上實驗室操作。

          • 使用免疫缺陷鼠時需降低病毒劑量(如1×10^2 TCID50)。

        3. 真菌感染模型

        示例:白色念珠菌(Candida albicans)系統(tǒng)性感染

        • 步驟

          1. 培養(yǎng)真菌至對數(shù)期,PBS洗滌后調整濃度(1×10^6 CFU/mL)。

          2. 尾靜脈注射100 μL菌液(1×10^5 CFU/小鼠)。

          3. 觀察生存曲線,取腎臟、脾臟進行CFU計數(shù)和組織病理學(PAS染色)。

        • 關鍵點

          • 免疫抑制小鼠(如環(huán)lin酰胺預處理)可增強感染表型。

        4. 寄生蟲感染模型

        示例:瘧原蟲(Plasmodium berghei)血液感染

        • 步驟

          1. 從感染小鼠采血(含蟲紅細胞),稀釋至1×10^6寄生紅細胞/mL。

          2. 腹腔或尾靜脈注射100 μL(1×10^5寄生紅細胞)。

          3. 每日采血涂片(吉姆薩染色),計算寄生蟲血癥(感染紅細胞百分比)。


        三、感染途徑選擇

        途徑適用模型操作要點
        氣管內滴注肺炎球菌、流感病毒需精準控制劑量,避免窒息。
        鼻內接種呼吸道病毒(SARS-CoV-2)非侵入性,但部分病毒可能擴散至腦部。
        腹腔注射敗血癥模型(大腸桿菌)操作簡單,但易引起全身炎癥而非局部感染。
        尾靜脈注射系統(tǒng)性感染(念珠菌、瘧原蟲)需熟練操作,避免漏液導致劑量不準。
        灌胃腸道感染(鼠傷寒沙men氏菌)需空腹處理,避免胃酸影響病原體活性。

        四、表型驗證方法

        1. 病原體載量

          • 細菌/真菌:組織勻漿后CFU計數(shù)。

          • 病毒:qPCR檢測病毒核酸或空斑試驗。

          • 寄生蟲:顯微鏡計數(shù)或熒光報告基因檢測。

        2. 宿主反應

          • 組織病理學(HE染色、免疫組化)。

          • 炎癥因子(ELISA或流式細胞術)。

          • 免疫細胞浸潤(流式檢測巨噬細胞、中性粒細胞等)。


        五、注意事項

        1. 生物安全

          • 根據病原體危險等級(BSL-1至BSL-4)選擇對應防護措施。

        2. 劑量優(yōu)化

          • 預實驗確定LD50或ID50,避免動物快速死亡或無表型。

        3. 對照設置

          • 空白對照(PBS)、滅活病原體對照、免疫抑制對照(如適用)。

        4. 倫理終點

          • 設定人道終點(如體重下降≥20%需安樂si)。


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